黄色网站在线免费观看_免费人成无码大片在线观看_日韩一二三区毛片_一本色道久久鬼综合88_一级香蕉视频在线观看_久久久国产精品视频_男人添女人下边视频大全免费_国产区欧美区一区二区三区

18611095289

down

資料下載

當(dāng)前位置:首頁資料下載佐劑誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎(AIA)

佐劑誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎(AIA)

發(fā)布時間:2020/5/9點擊次數(shù):2964

佐劑誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎(AIA

背景介紹

1956年,Pearson 發(fā)現(xiàn)用*佐劑免疫大鼠可誘發(fā)關(guān)節(jié)炎。這種關(guān)節(jié)炎模型,被稱為佐劑誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎,被廣泛用作關(guān)節(jié)炎研究的動物模型。AIA 也可用其他的其他細菌誘導(dǎo):比如丁酸、表皮葡萄球菌等。Kohashi等研究發(fā)現(xiàn):肽聚糖是這些細菌細胞壁中共同的致病因素,肽聚糖衍生物MDP中具有較低的致病性。

通過引入關(guān)節(jié)炎大鼠的T細胞(不是血清抗體)可以再正常的大鼠誘導(dǎo)關(guān)節(jié)炎。關(guān)節(jié)炎性T細胞識別結(jié)合菌65kDa熱休克蛋白的抗原表位(180-188殘基),這個表位結(jié)構(gòu)與結(jié)蹄組織中蛋白聚糖連接態(tài)的結(jié)構(gòu)相同。這表明,T細胞對自體成分有免疫應(yīng)答,有助于誘發(fā)關(guān)節(jié)炎。

備注

以前,AIA被用作關(guān)節(jié)炎研究的動物模型,但這種關(guān)節(jié)炎被認為是反應(yīng)性關(guān)節(jié)炎而不是真正的關(guān)節(jié)炎。研究表明:AIA動物模型與真正的關(guān)節(jié)炎在組織學(xué)和免疫學(xué)特征上是有區(qū)別的。AIA模型用于外部因素激發(fā)的導(dǎo)致的自身免疫應(yīng)答機制研究。

實驗動物供應(yīng)商

即使是同一品系,不同供應(yīng)商提供的大鼠在遺傳背景上和菌群上也不同。這種差異導(dǎo)致實驗結(jié)果上的差異。Chondrex 推薦客戶在批量實驗前,先做預(yù)實驗,比較不同供應(yīng)商實驗動物的差異。

室內(nèi)條件

環(huán)境因素的影響對于AIA模型也非常重要。比如:無菌的Fisher 344(F344)大鼠對AIA非常易感,SPF動物條件和常規(guī)的動物條件, 會產(chǎn)生嚴(yán)重的關(guān)節(jié)炎。傳統(tǒng)的動物條件也會誘發(fā)F344大鼠發(fā)生關(guān)節(jié)炎,但是嚴(yán)重程度和發(fā)病率要相對低于20%

大鼠品系和日齡

Lewis、SDWister BN大鼠被認為是AIA誘導(dǎo)的易感品系。 BUF、F344及糖尿病大鼠是中度和輕度的易感品系。易感性因動物供應(yīng)商、免疫劑量及分枝桿菌的來源和制備方法的不同而不同。推薦6-12周齡的大鼠用于誘導(dǎo)AIA模型。大鼠幼鼠(1-7日齡)不易感,而老齡鼠(≥9個月)相對抗性太強。

注:Dark agouti(DA)大鼠對AIA(*佐劑誘導(dǎo)),CIA(膠原誘導(dǎo)),OIA(不*佐劑誘導(dǎo))的關(guān)節(jié)炎都非常易感。這個品系的關(guān)節(jié)炎病理機制與其他品牌誘導(dǎo)的AIA模型可能是不同的。因此,如果用DA大鼠誘導(dǎo)AIA模型做研究比較復(fù)雜,需要考慮更多的影響因素。

           常用的誘導(dǎo)AIA動物模型的品系

 

高度易感品系

Wister-Lewis

Sprague-Dawley (SD)

Wistar

Brown Norway (BN)

中低度易感品系

Buffalo (BUF)

Fisher 344 (F344)

Diabetic resistant subline of diabetic BB (DR BB)

不易感品系

Wistar Furth(WF)

佐劑

A.油劑類型

礦物油的來源也是影響AIA造模的關(guān)鍵因素。弗氏不*佐劑(cat7002#)常被用于相應(yīng)的油劑,但是可用于生物降解的植物油,例如:橄欖油也可以用作佐劑。有報道表明用海鮫油劑誘導(dǎo)低敏感性的F344大鼠非常有效。但在實際應(yīng)用中,礦物油,海鮫油,液體石蠟對于誘導(dǎo)易感品系的大鼠具有相同的效果。

B.結(jié)核桿菌

不同來源的分枝桿菌分離出的肽聚糖、胞壁酰二肽(MDP),都被用作抗原誘導(dǎo)AIA.。滅活的分枝桿菌顆粒大小是影響AIA造模的重要因素。小的顆粒相比大顆?;蚓酆衔锞哂懈玫拿庖咴?。為了有效誘導(dǎo)AIA模型,推薦結(jié)核桿菌濃度至少5mg/ml。 10mg/ml(cat#7027)被廣泛應(yīng)用于AIA模型誘導(dǎo)。

注:1mg/ml 的*佐劑,由于結(jié)核桿菌濃度太低,很難有效誘發(fā)AIA模型。

貨號

名稱

7002

Incomplete Freund’s Adjuvant, 5 ml

7027

Complete Freund’s Adjuvant, 5 ml x 10 mg/ml

7024

Complete Freund’s Adjuvant, 5 ml x 20 mg/ml

免疫方法

通過單次尾根部皮下注射,對易感品系很容易誘發(fā)AIA動物模型,對于一些不敏感的品系,佐劑需要進入淋巴系統(tǒng)才能產(chǎn)生免疫應(yīng)答。研究表明,對于F344這種不敏感的品系,淋巴系統(tǒng)免疫佐劑比常規(guī)足墊免疫誘發(fā)AIA更有效。

每次免疫前都需要重懸佐劑,保證結(jié)核桿菌混勻,如果沒有重懸,佐劑中的結(jié)核桿菌分布不均勻。

注:乳化佐劑

AIA模型不需要對佐劑進行乳化。但是為了避免出現(xiàn)結(jié)核桿菌分布不均勻的問題,*佐劑常與生理鹽水或緩沖液等體積制備乳劑用于誘導(dǎo)AIA。有報道用*佐劑與肽聚糖或MDP混合制備乳劑誘導(dǎo)F344大鼠的AIA模型。關(guān)于乳劑的制備方法,請參考A部分“乳劑制備操作流程”

佐劑誘導(dǎo)的關(guān)節(jié)炎操作流程(AIA

A.佐劑制備

Chondrex公司提供10mg/ml cat#7027)和20mg/ml(cat#7024),在注射之前混勻佐劑,確保結(jié)核桿菌均勻分布。

B.注射

選擇足底免疫還是尾根部免疫取決于具體的研究目的。

1.足底免疫

后爪足墊皮下免疫0.05ml *佐劑(cat#7027 10 mg/ml)。針頭應(yīng)插入足墊皮下指向腳踝方向:這樣能夠保證佐劑引流到淋巴結(jié)。30min內(nèi)會看到嚴(yán)重的急性炎癥反應(yīng),高峰期3-4天,通常情況下回持續(xù)20-25天。免疫的后爪不能作為評分標(biāo)準(zhǔn),因為即使其四肢都沒有腫脹,免疫的后爪也會發(fā)生腫脹。

免疫后12-14天在未注射的爪子發(fā)生腫脹,高峰期2-3天,關(guān)節(jié)炎會持續(xù)20-25天。但是有一些大鼠會反生由骨膜反應(yīng)引起的慢性骨性肥大。

2.尾根部免疫

尾根部皮下免疫0.05ml *佐劑(cat#7027 10 mg/ml)。這種方法的有點是能夠使4只爪子都發(fā)生腫脹。免疫后12-14天在爪子發(fā)生腫脹,關(guān)節(jié)炎會持續(xù)20-25天。

注:如果用(cat#7024 20 mg/ml)佐劑免疫,注射體積應(yīng)降低一半。

            圖1.尾根部皮下免疫

C.關(guān)節(jié)炎評估

1)評分:

關(guān)節(jié)炎嚴(yán)重程度可以通過外觀評分。10-25天,通過日常觀察,評估疾病的發(fā)展進程。如果采取尾根部免疫,四肢都要做評分(0-4分):0分:正常 1分:中度關(guān)節(jié)炎 4分:嚴(yán)重的關(guān)節(jié)炎。尾根部免疫關(guān)節(jié)炎評分高分為16分(4只爪總分),如果采取足墊免疫評分高為12分(免疫的爪不做評分)。除每日評分外,在實驗結(jié)束后,記錄每個爪的評分。后者反應(yīng)了關(guān)節(jié)炎的炎癥的加重程度,特別是前后爪發(fā)病不同步的時候。

2)足趾厚度和體積評估

足趾腫脹也可以通過測定足趾厚度和體積進行評估,可以采用足趾測量儀或體積測定儀進行測定評估。

3)局部熱療評估

局部熱療評估是是非常準(zhǔn)確的檢測炎癥程度的指標(biāo),這種方法操作簡單且非常靈敏??梢杂茫航佑|式溫度計測量爪子表面溫度。

                         圖2.AIA模型的抗炎癥藥物評估

0.05ml 10mg/ml的佐劑誘導(dǎo)的SD大鼠的AIA模型。0-20天每天口服抗炎癥藥物(E-5110: 3 mg/kg)。通過測定1-20天,后爪(左)的炎癥和14-20后爪(右)炎癥反應(yīng)評估藥物效果。紅色:對照大鼠 紫色:藥物處理的大鼠。

參考文獻

1. C. Pearson. Development of arthritis, periarthritis and periotitis in rats given adjuvant. Proc Soc Exp Biol Med 1956;91:95-101.

2. Kobashi O, Pearson CM, Beck FW, Narita T, Kotani S.Arthritogenecity in rats of cell walls from several Streptococci,Staphylococci and two other bacteria. Proc Soc Exp Biol Med 1976;152:156-60.

3. Best R, Christian R, Lewis DA. Effect of particle size of dried mycobacteria on adjuvant induced arthritis in the rat. In?ammation Res 1984;14:256-68.

4. Kohashi O, Kuwata J, Umehara K, Uemura F, Takahashi T,Ozawa A. Susceptibility to adjuvant-induced arthritis among germfree, specific-pathogen-free, and conventional rats. Infection

& Immunity 1979;26:791-4.

5. Kohashi O, Pearson CM, Watanabe Y, Kotani S, Koga T. Structural requirements for arthritogenecity of peptidoglycans from Staphylococcus aureus and Lactobacillus plantarum and

analogous synthetic compounds. J Immunol 1976;116:1635-39.

6. van Eden, W Thole JE, van der Zee R, et al. Cloning of the mycobacterial epitope recognized by T lymphocytes in adjuvant arthritis. Nature 1988;331:171-3.

7. van Eden, W Holoshitz J, Nevo Z, et al. Arthritis induced by aT-lymphocyte clone that responds to mycobacterium tuberculosis and to cartilage proteoglycans. Proc Natl Acad Sci USA

1985;82:5117-20.

8. Lorentzen JC. Identification of arthritogenic adjuvants of self and foreign origin. Scan J immunol 1999;49:45-50.

9. Kohashi O, Pearson CM, Beck FW, Alexander M. Effect of oil composition on both adjuvant-induced arthritis and delayed hypersensitivity to purified protein derivative and peptidoglycans in various rats strains. Infec Immun 1977;17:244-9.

10. Cremer MA, Towns AS, Kang AH. Adjuvant-induced arthritis in rats. Evidence that autoimmunity to homologous collagen types I, II, IX and XI is not involved in the pathogenesis of arthritis. Clin

Exp Immunol 1990;82:307-12.

11. Whitehouse MW. Adjuvant-induced polyarthritis in rats. Handbook of animal models for the rheumatic diseases. CRC Press 1988;1:3-

12. Shirota H, Kobayashi S, Shiojiri H, Igarashi T. Determination of in?amed paw surface temperature in rats. J Pharmacol Methods

1984;12:35-43.

13. Shirota H, Goto M, Katayama K. Application of adjuvant-induced local hyperthermia for evaluation of anti-in?ammatory drugs. J Pharmacol Exp Ther 1988;247:1158-63.

14. L. Bevaart, M. J. Vervoordeldonk, P. P. Tak, Evaluation of therapeutic targets in animal models of arthritis: How does it relate to rheumatoid arthritis? Arthritis & Rheumatism 2010;62:2192–2205.

15. O. Kohashi et al., Susceptibility to adjuvant-induced arthritis among germfree, specific-pathogen-free, and conventional rats. Infect. Immun 1979;26:791794.

 

 

文件下載    

服務(wù)熱線
18611095289

掃碼加微信