流式細胞儀標本的制備
流式細胞儀(FCM)是八十年代集單克隆抗體、熒光化學、激光、計算機等高技術發(fā)展起來的一種先進儀器,已廣泛應用于免疫學、生物化學、生物學、腫瘤學以及血液學等方面的研究和臨床常規(guī)工作。其中檢測人白細胞表面標志可對白血病、淋巴瘤作用迅速正確的診斷,對淋巴細胞群和亞群進行分類,還能分離純化某一群或亞群細胞?;罴毎庖邿晒饧夹g是用于FCM檢測的標本準備,染色后也能在熒光顯微鏡下進行觀察,在某些實驗條件下,活細胞免疫熒光染色后的特異性和敏感性要優(yōu)于滴片固定的常規(guī)間接免疫熒光的
結果。
?。ㄒ唬≡?br /> 活細胞表面保留有較完整的抗原或受體,先用特異性鼠源性單克隆抗體與細胞表面相應抗原結合,再用熒光標記的第二抗體結合,根據所測定的熒光強度和陽性百分率即可知相應抗原的密度和分布。
(二) 操作步驟
制備活性高的細胞懸液(培養(yǎng)細胞系、外周血單個核細胞、
胸腺細胞、脾細胞等均可用于本法)
↓
用10%FCS RPMI1640調整細胞濃度為
5×106~1×107/ml
↓
取40μl細胞懸液加入預先有特異性McAb(5~50μl)
的小玻璃管或塑料離心管,再加50μl 1∶20(用DPBS
稀釋)滅活正常兔血清
↓4℃ 30min
用洗滌液洗滌2次,每次加洗滌液2ml左右
1000rpm×5min
↓
棄上清,加入50μl工作濃度的羊抗鼠
(或兔抗鼠)熒光標記物,充分振搖
↓ 4℃ 30min
用洗滌液洗滌2次,每次加液2ml左右
1000rpm×5min
↓
加適量固定液(如為FCM制備標本,一般加入
1ml固定液,如制片后在熒光顯微鏡下觀察,
視細胞濃度加入100~500μl固定液)
↓
FCM檢測或制片后熒光顯微鏡下觀察
?。吮驹谠嚬苤锌杀4?~7天)
?。ㄈ≡噭┖推鞑?br /> 1. 各種特異性單克隆抗體。
2. 熒光標記的羊抗鼠或兔抗鼠第二抗體,滅活正常兔血清。
3. 10% FCS RPMI1640, DPBS、洗滌液、固定液(見附錄)。
4. 玻璃管、塑料管、離心機、熒光顯微鏡等。
?。ㄋ模∽⒁馐马?br /> 1. 整個操作在4℃下進行,洗滌液中加有比常規(guī)防腐劑量高10倍的NaN3,上述實驗條件是防止一抗結合細胞膜抗原后發(fā)生交聯(lián)、脫落。
2. 洗滌要充分,以避免游離抗體封閉二抗與細胞膜上一抗相結合,出現假陰性。
3. 加適量正常兔血清可封閉某些細胞表面免疫球蛋白Fc受體,降低和防止非特異性染色。
4. 細胞活性要好,否則易發(fā)生非特異性熒光染色。
附:
1. DPBS (×10, 貯存液)
NaCl 80g
KCl 2g 蒸餾水加至1000ml
Na2HPO4 11.5g 臨用時用蒸餾水1∶10稀釋
KH2PO4 2g
2. 洗滌液
DPBS 900ml
FCS 50ml (終濃度 5%)
4%NaN3 50ml (終濃度0.2%)
3. 固定液
DPBS 1000ml
葡萄糖 20g (終濃度2%)
甲 醛 10ml
NaN3 0.2g (終濃度0.02%)